福爾馬林固定時(shí)，組織中的許多氨基酸殘基在分子內(nèi)或分子間形成了醛鍵，使得不少抗原決定簇被封閉。同時(shí)，由于甲醛的聚合作用，使蛋白質(zhì)分子間相互交聯(lián)形成大分子網(wǎng)絡(luò)，也導(dǎo)致了抗原決定簇被掩蓋，這就使得相當(dāng)部分的抗原不能與抗體很好是進(jìn)行反應(yīng)。因此，抗原修復(fù)也是影響免疫組化染色結(jié)果的基本因素。

　　抗原修復(fù)(Antigen retrieval ，AR)技術(shù)，建立在Fraenkel-conrat等人[1]一系列生物化學(xué)研究，經(jīng)1991年shi等人[2]發(fā)展�？乖�修復(fù)是指石蠟、冰凍、火棉膠、塑料切片免疫組織化學(xué)(IHC)前用胰蛋白酶、尿素、表面活性劑、微波緩沖液和金屬鹽等，使被掩蓋的抗原決定簇或變性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢復(fù)過程�？乖�修復(fù)能最大程度地恢復(fù)在制片等過程中損失的抗原性，使原來認(rèn)為不能在石蠟切片上進(jìn)行IHC的許多抗體獲得了良好的染色結(jié)果，成為一種有效的補(bǔ)救措施。

　　抗原修復(fù)(Antigen retrieval ，AR)技術(shù)

　　加熱AR技術(shù)

　　1.1 微波加熱方法.

　　在傳統(tǒng)標(biāo)準(zhǔn)方法,經(jīng)脫蠟、脫水和用3%H2O2阻斷內(nèi)源性過氧(化)物酶，石蠟切片經(jīng)蒸餾水沖洗，放置在塑料Coplin缸中。加入AR液，如蒸餾水、緩沖液、金屬鹽液、尿素等，蓋上并置家用微波爐加熱5或10分鐘(注意防止切片干躁)。有時(shí)在加熱5分鐘后，間隔1分鐘，再加熱5分鐘(在第一個(gè)5分鐘后檢測液體高度)。加熱后，從微波爐取出塑料Coplin缸，冷卻15分鐘。片子經(jīng)蒸餾水沖洗二次后在PBS液中浸5分鐘，才進(jìn)行IHC染色。為了保持一致的加熱條件，必須設(shè)定靠近微波爐中心相同的位置及同一編號的Coplin缸 ，按照不同的抗體設(shè)定不同的加熱時(shí)間，盡可能的建立標(biāo)準(zhǔn)的加熱條件。

　　微波(MW)加熱過程如下：在專用盒內(nèi)放入200ml檸檬酸緩沖液(PH6.0±0.1)，并蓋上帶有小孔的蓋子，微波加熱至沸騰;將脫蠟水化后的組織切片置于耐高溫塑料切片架中，放入已沸騰緩沖液中，有作者提供做免疫組化時(shí)采用微波爐中等功率800W[3]，微波爐選用解凍檔的國產(chǎn)家用微波爐(根據(jù)目前的研究,建議用醫(yī)用微波爐)，中檔繼續(xù)處理10-20分鐘;取出微波塑料缸冷卻至室溫，從緩沖液中取出玻片，片子經(jīng)蒸餾水沖洗二次，之后用 PBS(PH7.2-7.4)沖洗兩次，每次3分鐘。

　　盡管有少數(shù)作者[4]認(rèn)為經(jīng)高溫后冷卻這一步省略。在我們觀點(diǎn)，15分鐘的冷卻必須的幾點(diǎn)理由：1、如這一步省略，對于有些抗體而言，會降低AR-IHC染色強(qiáng)度。2、突然從高溫到低溫可導(dǎo)致組織片掉片。3、可能引起形態(tài)學(xué)的變化。

　　1.2 單純加熱方法.

　　將切片放入盛有檸檬酸緩沖液的容器中,置電爐(600W)上加熱至沸騰，并持續(xù)10min 。Shi等人[2]用單純加熱方法與微波加熱方法比較IHC染色強(qiáng)度，顯示兩種方法導(dǎo)致相同的染色強(qiáng)度。

　　1.3 高壓加熱方法.

　　Shin等人[5]發(fā)展了含水高壓鍋煮沸方法，來增強(qiáng)福爾馬林固定的腦組織tau蛋白免疫反應(yīng)性。將切片連同檸檬酸緩沖液放入高壓鍋內(nèi)，加熱至產(chǎn)生噴氣，并持續(xù)2min，壓力鍋離開熱源，加熱長短的控制很重要，從組織切片放入緩沖液到高壓鍋到壓力鍋離開熱源總時(shí)間在5-8分鐘，時(shí)間過長可能會使染色背景加深�，F(xiàn)試劑公司提供的大多數(shù)抗體都建議使用高壓鍋煮沸方法，這幾年的實(shí)踐表明，采取此方法可避免假陽、陰性，使IHC染色效果更佳。

　　非加熱AR技術(shù)

　　非加熱AR技術(shù)包括酶消化、酸水解等方法。目前，主要是酶消化，酶消化是以化學(xué)的方法來打斷醛鍵，修復(fù)抗原。

　　2.1 胰蛋白酶消化法.

　　取0.05g或0.1g胰蛋白酶加入100ml0.05%或0.1%PH7.8的無水氯化鈣水溶液中，溶解即可;或由邁新提供的0.125%的液體胰酶。將切片放入濕盒內(nèi)37oC溫箱中消化18-20分鐘。

　　2.2 胃蛋白酶消化法 . 用0.1mol/L HCL配制成0.4%的胃蛋白酶;

　　2.3 鏈霉蛋白酶消化法 .

　　將鏈霉蛋白酶溶于0.5mol/LpH7.4的Tris-HCL中，濃度為o.1%，消化時(shí)間20min。

　　抗原修復(fù)的方法選擇，關(guān)系到組織抗原能否暴露充分，這對免疫組化染色效果有很大影響。因此應(yīng)當(dāng)根據(jù)不同的抗原特點(diǎn)，采用不同的修復(fù)方法。對某些細(xì)胞內(nèi)抗原(如Fas、Bax、FⅧ等)和細(xì)胞間質(zhì)抗原(如Laminin、CoIV等)則需要用酶消化法處理切片。常用的消化酶為胰蛋白酶和胃蛋白酶。一般說來，胰蛋白酶消化能力較胃蛋白酶弱，主要用于細(xì)胞內(nèi)抗原的消化，胃蛋白酶主要用于細(xì)胞間抗原的消化。工作中要認(rèn)真參照抗體說明書指示進(jìn)行消化酶的選擇，這樣針對性更強(qiáng)，標(biāo)記效果更理想。

　　總之,以高壓加熱方法、微波加熱方法較為穩(wěn)定, 高壓加熱方法效果優(yōu)于微波加熱方法和單純加熱方法。溶液的濃度對修復(fù)效果無任何影響，而PH值則影響較大。緩沖液以檸檬酸緩沖液和Tris-HCL較常用。前人的研究表明，溫度高修復(fù)時(shí)間短[6]。解放軍第251醫(yī)院根據(jù)臨床病理診斷、鑒別診斷和研究的實(shí)際需要，在抗原修復(fù)方法規(guī)范研究和應(yīng)用的基礎(chǔ)上，創(chuàng)用了胰蛋白酶—尿素聯(lián)合消化技術(shù)、鹽酸水解暴露抗原技術(shù)和MW—表面活性劑Triton X—100(MW—TX)修復(fù)抗原技術(shù) [7] �？乖�暴露或抗原修復(fù)方法較多，其中發(fā)MW—枸櫞酸緩沖液使用較多，效果最好。MW修復(fù)抗原的方法是石蠟切片脫蠟、水洗后放入修復(fù)液中，用250W的輸出功率2X5min，待冷卻至室溫按常規(guī)處理。目前AR過程已成功應(yīng)用在BioTek全自動免疫組化染色儀中。

　　AR應(yīng)注意的問題

　　加熱持續(xù)時(shí)間和強(qiáng)度是重要的影響因素之一，AR液的PH值、濃度、化學(xué)成分也是重要的影響因素之一。使用低PH值A(chǔ)R液必須使用陰性對照片，以防止定位不準(zhǔn)[9]。Shi等人[10]強(qiáng)調(diào)修復(fù)緩沖液的PH值對某些抗原的修復(fù)十分重要,實(shí)驗(yàn)中我們也發(fā)現(xiàn)要獲得滿意結(jié)果必須選擇抗原修復(fù)液的最適PH值。在常規(guī)石蠟切片做AR-IHC，采用不同濃度的Alcl3液做AR液，發(fā)現(xiàn)4%的Alcl3取得最理想的染色[11]。在修復(fù)的抗原中，金屬鹽可影響蛋白的結(jié)構(gòu)。鄭輝等人[12]使用0.01mmol/LPBS、0.01mol/L檸檬酸緩沖液、0.1mol/L Tris-HCL緩沖液及1mmol/L EDTA-Na2，于微波修復(fù)抗原，發(fā)現(xiàn)其陽性強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。

　　高溫抗原修復(fù)因其機(jī)理相當(dāng)復(fù)雜，對某些存在的問題很難用設(shè)計(jì)對照的方法加以解決，有些抗體在冰凍切片上呈陰性反應(yīng)，但在石蠟切片用抗原修復(fù)后卻能很好的顯示。對某些應(yīng)表達(dá)在胞漿或表達(dá)在核內(nèi)的抗原，經(jīng)過量修復(fù)后，絕大部分表達(dá)在核內(nèi)，例如，P185、Bcl-2、P-gp、Nm23，而有些表達(dá)在核內(nèi)的抗原經(jīng)過量修復(fù)會出現(xiàn)在胞漿內(nèi)，例如P53、PcNA、Ki-67等[6]。在使用該方法時(shí)一定小心，對結(jié)果的判斷也要客觀地作出分析，侯寧等人發(fā)現(xiàn)端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶(TRT)經(jīng)過抗原修復(fù)與不經(jīng)過抗原修復(fù)，其染色效果明顯不同，后者的陽性率明顯高于前者[8]。

　　操作中還應(yīng)注意如下問題：

　　1、熱處理后應(yīng)注意自然冷卻。

　　2、熱處理時(shí)要防止切片干燥。

　　3、應(yīng)根據(jù)不同的抗體選擇合適的抗原修復(fù)方法。

　　4、一批抗原的檢測其溫度和時(shí)間一定保持一致。

　　5、注意形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)的改變(一般經(jīng)高溫修復(fù)后胞漿會明顯的破壞，而對細(xì)胞核的影響較大， 會出現(xiàn)核破裂，蘇木素淡染等現(xiàn)象，而經(jīng)酶水解的切片，其細(xì)胞漿破壞視消化時(shí)間而異，但核破壞較輕)。

　　6、如果在常用的緩沖液中無法實(shí)現(xiàn)抗原修復(fù)，或經(jīng)修復(fù)后抗原定位發(fā)生改變，可改用一些不常用的緩沖液，或加一些螯合劑，如EDTA等可改善某些抗原的修復(fù)。

　　用于IHC消化的酶很多，所選酶的種類，使用的濃度，PH值，消化時(shí)間及溫度等均要視組織固定的不同，所檢測抗原的性質(zhì)、組織類型的不同而異，應(yīng)通過預(yù)實(shí)驗(yàn)摸索確定。使用酶消化的原則：胰蛋白酶和蛋白酶K一般用于細(xì)胞內(nèi)抗原，如Keratin，CEA，GFAP等。胃蛋白酶則主要用于細(xì)胞間質(zhì)抗原的檢測，如fibronectin，Laminin，各型膠原等。一般來言，消化時(shí)間和組織固定的長短呈正比。在用酶消化，熱修復(fù)后均不能獲得結(jié)果的前提下使用抗原修復(fù)與酶消化結(jié)合的方法，有時(shí)會取得較為滿意的結(jié)果。一般蛋白酶K和微波相結(jié)合，但應(yīng)注意，可能檢測的抗原無論何種性質(zhì)均會在核內(nèi)出現(xiàn)假陽性反應(yīng) [6]。

　　AR的臨床應(yīng)用

　　上個(gè)世紀(jì)九十年代早期，隨著AR技術(shù)的發(fā)展，IHC應(yīng)用在常規(guī)處理火膠棉包埋的人類顳骨上，從分子水平上了解人類發(fā)病機(jī)理和病理生理學(xué)，創(chuàng)立了一個(gè)新的領(lǐng)域[13]。使用AR方法，在常規(guī)處理石蠟切片上評估IC5和ID15單克隆抗體的免疫組化染色[14]。 Charalambous. C等人 [15]強(qiáng)烈推薦MW-AR-IHC方法檢測R-S細(xì)胞的CD30。AR技術(shù)成功應(yīng)用于原位雜交[16]。利用加熱AR-IHC技術(shù)，在福爾馬林固定、石蠟組織切片上用抗毒素#4350檢測nestin[17]。采用抗復(fù)技術(shù)，在人類上皮、神經(jīng)、神經(jīng)內(nèi)分泌組織中免疫組化定位DCC蛋白[18]。AR- IHC已廣泛應(yīng)用于臨床的研究中。

　　AR的標(biāo)準(zhǔn)化和發(fā)展

　　抗原修復(fù)的確切原理尚不十分清楚，根據(jù)國內(nèi)外文獻(xiàn)報(bào)道，推測可能是：1、溶解、洗脫變性蛋白。2、水解作用。3、微波場內(nèi)離子或極性分子直接碰撞的修復(fù)作用[7]�？乖�修復(fù)是否可能?理論上研究尚未清楚，但是以高溫、高壓、對常規(guī)石蠟切片進(jìn)行抗原修復(fù)處理經(jīng)驗(yàn)表明，可以提高抗原抗體陽性檢測率，同時(shí)也會出現(xiàn)假陽性。

　　診斷IHC上的AR技術(shù)及其在基礎(chǔ)領(lǐng)域的研究已被為數(shù)眾多的文獻(xiàn)和比較多的綜述所闡述。此領(lǐng)域的調(diào)查目的：從分子生物學(xué)診斷常規(guī)上，在石蠟組織中檢測核酸和蛋白質(zhì)新途徑的可能性，從而形成新興的分子形態(tài)學(xué)。一些新的途徑必須建立標(biāo)準(zhǔn)化的原則和提高其重復(fù)性。[19] 。目前我國病理科大多數(shù)醫(yī)院病理科尚未在IHC、AR上標(biāo)準(zhǔn)化，國外已廣泛進(jìn)行進(jìn)行AR的標(biāo)準(zhǔn)化及IHC標(biāo)準(zhǔn)化[20]。例如在建立新的修復(fù)液方面，針對不同的抗體預(yù)定義加熱條件和液體濃度、PH值、化學(xué)成分，從而推動AR的標(biāo)準(zhǔn)化。

　　現(xiàn)AR技術(shù)已廣泛應(yīng)用于免疫組化(IHC)各領(lǐng)域的研究，例如在診斷病理學(xué)和IHC的標(biāo)準(zhǔn)化方面。對原來僅表達(dá)在冰凍切片上的抗原，利用AR后絕大部分抗體能用于常規(guī)甲醛固定的石蠟切片上，對IHC回顧性研究和臨床病理IHC鑒別診斷，腫瘤患者術(shù)后的預(yù)后檢測及療效評估具有積極的意義。