一、基于分子雜交的分子診斷技術(shù)

　　上世紀(jì)60年代至80年代是分子雜交技術(shù)發(fā)展最為迅猛的20年，由于當(dāng)時(shí)尚無法對樣本中靶基因進(jìn)行人為擴(kuò)增，人們只能通過已知基因序列的探針對靶序列進(jìn)行捕獲檢測。其中液相和固相雜交基礎(chǔ)理論、探針固定包被技術(shù)與cDNA探針人工合成的出現(xiàn)，為基于分子雜交的體外診斷方法進(jìn)行了最初的技術(shù)儲備。

　　(一)DNA印跡技術(shù)(Southernblot)

　　Southern于1975年發(fā)明了DNA印跡技術(shù)，通過限制性內(nèi)切酶將DNA片段化，再以凝膠電泳將長度不等的DNA片段進(jìn)行分離，通過虹吸或電壓轉(zhuǎn)印至醋酸纖維膜上，再使膜上的DNA變性與核素標(biāo)記的寡核苷酸探針進(jìn)行分子雜交，經(jīng)洗脫后以放射自顯影鑒別待測的DNA片段-探針間的同源序列。這一方法由于同時(shí)具備DNA片段酶切與分子探針雜交，保證了檢測的特異性。因此，一經(jīng)推出后便成為探針雜交領(lǐng)域最為經(jīng)典的分子檢測方法，廣為運(yùn)用于各種基因突變，如缺失、插入、易位等，及與限制性酶切片段長度多態(tài)性(restrictionfragment length polymorphism，RFLP)的鑒定中。Alwine等于1977年推出基于轉(zhuǎn)印雜交的Northernblot技術(shù)也同樣成為當(dāng)時(shí)檢測RNA的金標(biāo)準(zhǔn)。

　　(二)ASO反向斑點(diǎn)雜交(allele-specificoligonucleotide reverse dot blot，ASO-RDB)

　　使用核酸印跡技術(shù)進(jìn)行核酸序列的雜交檢測具有極高的特異性，但存在操作極為繁瑣，檢測時(shí)間長的缺點(diǎn)。1980年建立的樣本斑點(diǎn)點(diǎn)樣固定技術(shù)則擺脫了傳統(tǒng)DNA印跡需要通過凝膠分離技術(shù)進(jìn)行樣本固定的缺點(diǎn)。通過在質(zhì)粒載體導(dǎo)入單堿基突變的方法，構(gòu)建了首條等位基因特異性寡核苷酸探針(allele-specificoligonucleotide，ASO)，更使對核酸序列點(diǎn)突變的檢測成為可能。1986年，Saiki[3]首次將PCR的高靈敏度與ASO斑點(diǎn)雜交的高特異性結(jié)合起來，實(shí)現(xiàn)了利用ASO探針對特定基因多態(tài)性進(jìn)行分型。其后為了完成對同一樣本的多個(gè)分子標(biāo)記進(jìn)行高通量檢測，Saiki[4]又發(fā)明了ASO-RDB，通過將生物素標(biāo)記的特異性PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與固定于膜上的探針雜交顯色，進(jìn)行基因分型、基因突變的檢測。該法可將多種寡核苷酸探針固定于同一膜條上，只需通過1次雜交反應(yīng)，即可篩查待檢樣本DNA的數(shù)十乃至數(shù)百種等位基因，具有操作簡單、快速的特點(diǎn)，一度成為基因突變檢測、基因分型與病原體篩選最為常用的技術(shù)。

　　(三)熒光原位雜交(fluorescencein situ hybridization，F(xiàn)ISH)

　　FISH源于以核素標(biāo)記的原位雜交技術(shù)，1977年Rudkin首次使用熒光素標(biāo)記探針完成了原位雜交的嘗試。在上世紀(jì)8090年代，細(xì)胞遺傳學(xué)和非同位素標(biāo)記技術(shù)的發(fā)展將FISH推向臨床診斷的實(shí)踐應(yīng)用。相比于其它僅針對核酸序列進(jìn)行檢測的分子診斷技術(shù)，F(xiàn)ISH結(jié)合了探針的高度特異性與組織學(xué)定位的優(yōu)勢，可檢測定位完整細(xì)胞或經(jīng)分離的染色體中特定的正�；虍惓�DNA序列;由于使用高能量熒光素標(biāo)記的DNA探針，可實(shí)現(xiàn)多種熒光素標(biāo)記同時(shí)檢測數(shù)個(gè)靶點(diǎn)。

　　如今，F(xiàn)ISH已在染色體核型分析，基因擴(kuò)增、 基因重排、病原微生物鑒定等多方面中得到廣泛應(yīng)用。通過比較基因組雜交(comparativegenomic hybridization，CGH)與光譜核型分析(spectralkaryotyping，SKY)等FISH衍生技術(shù)，使其正在越來越多的臨床診斷領(lǐng)域中發(fā)揮作用。

　　(四)多重連接探針擴(kuò)增技術(shù)(multiplexligation-dependent probe amplification，MLPA)

　　MLPA技術(shù)于2002年由Schouten等[6]首先報(bào)道。每個(gè)MLPA探針包括2個(gè)熒光標(biāo)記的寡核苷酸片段，1個(gè)由化學(xué)合成，1個(gè)由M13噬菌體衍生法制備;每個(gè)探針都包括1段引物序列和1段特異性序列。在MLPA反應(yīng)中，2個(gè)寡核苷酸片段都與靶序列進(jìn)行雜交，再使用連接酶連接2部分探針。連接反應(yīng)高度特異，只有當(dāng)2個(gè)探針與靶序列完全雜交，連接酶才能將2段探針連接成1條完整的核酸單鏈;反之，如果靶序列與探針序列不完全互補(bǔ)，即使只有1個(gè)堿基的差別，就會導(dǎo)至雜交不完全，使連接反應(yīng)無法進(jìn)行。連接反應(yīng)完成后，用1對熒光標(biāo)記的通用引物擴(kuò)增連接好的探針，每個(gè)探針擴(kuò)增產(chǎn)的長度都是唯一的。最后，通過毛細(xì)管電泳分離擴(kuò)增產(chǎn)物，便可對把核酸序列進(jìn)行檢測。由于巧妙地借鑒了擴(kuò)增探針的原理，MLPA技術(shù)最多可在1次反應(yīng)中對45個(gè)靶序列的拷貝數(shù)進(jìn)行鑒定。

　　該技術(shù)具備探針連接反應(yīng)的特異性與多重?cái)U(kuò)增探針雜交的高通量特性。經(jīng)過MRC-Holland公司10余年的發(fā)展，MLPA技術(shù)已成為涵蓋各種遺傳性疾病診斷、藥物基因?qū)W多遺傳位點(diǎn)鑒定、腫瘤相關(guān)基因突變譜篩查、DNA甲基化程度定量等綜合分子診斷體系，是目前臨床最為常用的高通量對已知序列變異、基因拷貝數(shù)變異進(jìn)行檢測的方法。

　　(五)生物芯片

　　1991年Affymetrix公司的Fordor[7]利用其所研發(fā)的光蝕刻技術(shù)制備了首個(gè)以玻片為載體的微陣列，標(biāo)志著生物芯片正式成為可實(shí)際應(yīng)用的分子生物學(xué)技術(shù)。時(shí)至今日，芯片技術(shù)已經(jīng)得到了長足的發(fā)展，如果按結(jié)構(gòu)對其進(jìn)行分類，基本可分為基于微陣列(microarray)的雜交芯片與基于微流控(microfluidic)的反應(yīng)芯片2種。

　　1.微陣列芯片

　　(1)固相芯片:微陣列基因組DNA分析(microarray-basedgenomic DNA profiling，MGDP)芯片:將微陣列技術(shù)應(yīng)用于MGDP檢測中已有超過十年的歷史，其技術(shù)平臺主要分為2類，即微陣列比較基因組雜交(array-basedcomparative genome hybridization，aCGH)和基因型雜交陣列(SNParray)。顧名思義，aCGH芯片使用待測DNA與參比DNA的雙色比對來顯示兩者間的拷貝數(shù)變異(CNV)的變化，而單核苷酸多態(tài)性(singlenucleotide polymorphism，SNP)芯片則無需與參比DNA進(jìn)行比較，直接通過雜交信號強(qiáng)度顯示待測DNA中的SNP信息。隨著技術(shù)的不斷進(jìn)步，目前市場上已出現(xiàn)可同時(shí)檢測SNP與CNV的高分辨率混合基因陣列芯片。MGDP芯片主要應(yīng)用于發(fā)育遲緩、先天性異�；�形等兒童遺傳病的輔助診斷及產(chǎn)前篩查。經(jīng)驗(yàn)證，使用MGDP芯片進(jìn)行染色體不平衡檢測與FISH的診斷符合率可達(dá)100%，表達(dá)譜芯片(geneexpression profiling array，GEParray)：1999年，Duggan等首次使用cDNA芯片繪制了mRNA表達(dá)譜信息。隨著表觀遺傳學(xué)在疾病發(fā)生發(fā)展中的作用日益得到重視，目前也已出現(xiàn)microRNA芯片、長鏈非編碼RNA(longnoncoding RNA，lncRNA)芯片等。類似于MGDP芯片，GEP芯片使用反轉(zhuǎn)錄后生成的cDNA文庫與固定于芯片載體上的核酸探針進(jìn)行雜交，從而檢測雜交熒光信號的強(qiáng)度判斷基因的表達(dá)情況。

　　相較于基因組雜交，GEP芯片對生物學(xué)意義更為重要的轉(zhuǎn)錄組信息進(jìn)行檢測，對疾病的診斷與預(yù)后判斷具有特殊的意義。目前使用GEP芯片對急性髓細(xì)胞白血病、骨髓增生異常綜合征等血液病及神經(jīng)退行性變等進(jìn)行診斷、分類及預(yù)后評估已經(jīng)獲得了令人滿意的效果;

　　(2)液相芯片:傳統(tǒng)固相芯片將檢測探針錨定于固相載體上捕獲目的序列，而Luminex公司的xMAP技術(shù)則通過搭配不同比例的2種紅色熒光染料，將聚苯乙烯微球標(biāo)記為不同的熒光色，并對其進(jìn)行編碼得到具有上百種熒光編號的微球。通過xTAG技術(shù)將不同的特異性雜交探針交聯(lián)至編碼微球上，使得不同的探針能夠通過微球編碼得以區(qū)分。利用混合后的探針-微球復(fù)合物與待測樣本進(jìn)行雜交，使微球在流動(dòng)鞘液的帶動(dòng)下通過紅綠雙色流式細(xì)胞儀，其中紅色激光檢測微球編碼，綠色熒光檢測經(jīng)雜交后核酸探針上熒光報(bào)告基團(tuán)的信號強(qiáng)度，一次完成對單個(gè)樣本中多種靶序列的同時(shí)鑒定。目前，該技術(shù)已在囊性纖維化等遺傳性疾病診斷、多種呼吸道病毒鑒定及人乳頭瘤病毒分型取得了廣泛的應(yīng)用。

　　2.微流控芯片

　　1992年Harrison等首次提出了將毛細(xì)管電泳與進(jìn)樣設(shè)備整合到固相玻璃載體上構(gòu)建“微全分析系統(tǒng)”的構(gòu)想，通過分析設(shè)備的微型化與集成化，完成傳統(tǒng)分析實(shí)驗(yàn)室向芯片上實(shí)驗(yàn)室(lab-on-chip)的轉(zhuǎn)變。微流控芯片(microfluidicchip)由微米級流體的管道、反應(yīng)器等元件構(gòu)成，與宏觀尺寸的分析裝置相比，其結(jié)構(gòu)極大地增加了流體環(huán)境的面積/體積比，以最大限度利用液體與物體表面有關(guān)的包括層流效應(yīng)、毛細(xì)效應(yīng)、快速熱傳導(dǎo)和擴(kuò)散效應(yīng)在內(nèi)的特殊性能，從而在1張芯片上完成樣品進(jìn)樣、預(yù)處理、分子生物學(xué)反應(yīng)、檢測等系列實(shí)驗(yàn)過程。

　　目前使用微流控芯片進(jìn)行指導(dǎo)用藥的多基因位點(diǎn)平行檢測是主要臨床應(yīng)用領(lǐng)域。

　　二、核酸序列測定

　　測序反應(yīng)是直接獲得核酸序列信息的唯一技術(shù)手段，是分子診斷技術(shù)的一項(xiàng)重要分支。雖然分子雜交、分子構(gòu)象變異或定量PCR技術(shù)在近幾年已得到了長足的發(fā)展，但其對于核酸的鑒定都僅僅停留在間接推斷的假設(shè)上，因此對基于特定基因序列檢測的分子診斷，核酸測序仍是技術(shù)上的金標(biāo)準(zhǔn)。

　　(一)第1代測序

　　1975年Sanger與Coulson發(fā)表了使用加減法進(jìn)行DNA序列測定的方法，隨后Maxam在1977年提出了化學(xué)修飾降解法的模型，為核酸測序時(shí)代的來臨拉開了序幕。

　　Sanger等于同年提出的末端終止法(Sanger測序法)利用2'與3'不含羥基的雙脫氧核苷三磷酸(ddNTP)進(jìn)行測序引物延伸反應(yīng)，ddNTP在DNA合成反應(yīng)中不能形成磷酸二酯鍵，DNA合成反應(yīng)便會終止。如果分別在4個(gè)獨(dú)立的DNA合成反應(yīng)體系中加入經(jīng)核素標(biāo)記的特定ddNTP，則可在合成反應(yīng)后對產(chǎn)物進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacrylamidegel electrophoresis，PAGE)及放射自顯影，根據(jù)電泳條帶確定待測分子的核苷酸序列。AppiedBiosystems公司在Sanger法的基礎(chǔ)上，于1986年推出了首臺商業(yè)化DNA測序儀PRISM 370A，并以熒光信號接收和計(jì)算機(jī)信號分析代替了核素標(biāo)記和放射自顯影檢測體系。該公司于1995年推出的首臺毛細(xì)管電泳測序儀PRISM 310更是使測序的通量大大提高。Sanger測序是最為經(jīng)典的一代測序技術(shù)，仍是目前獲取核酸序列最為常用的方法。

　　(二)第2代測序

　　1.焦磷酸測序(Pyro-sequencing)

　　不同于Sanger測序法所使用的合成后測序理念，Ronaghi分別于1996年與1998年提出了在固相與液相載體中通過邊合成邊測序的方法-焦磷酸測序。其基本原理是利用引物鏈延伸時(shí)所釋放的焦磷酸基團(tuán)激發(fā)熒光，通過峰值高低判斷與其相匹配的堿基數(shù)量。由于使用了實(shí)時(shí)熒光監(jiān)測的概念，焦磷酸測序?qū)崿F(xiàn)了對特定位點(diǎn)堿基負(fù)荷比例的定量，因此在SNP位點(diǎn)檢測、等位基因(突變)頻率測定、細(xì)菌和病毒分型檢測方面應(yīng)用廣泛。由于熒光報(bào)告原理不同，其對于序列變異的檢測靈敏度從Sanger測序的20%提高到了5%。但由于該技術(shù)的儀器采購與單次檢測成本較高，目前尚未得到大規(guī)模的臨床使用。

　　2.高通量第2代測序

　　目前常見的高通量第二代測序平臺主要有Roche454、IlluminaSolexa、ABISOLiD和LifeIon Torrent等，其均為通過DNA片段化構(gòu)建DNA文庫、文庫與載體交聯(lián)進(jìn)行擴(kuò)增、在載體面上進(jìn)行邊合成邊測序反應(yīng)，使得第1代測序中最高基于96孔板的平行通量擴(kuò)大至載體上百萬級的平行反應(yīng)，完成對海量數(shù)據(jù)的高通量檢測。該技術(shù)可以對基因組、轉(zhuǎn)錄組等進(jìn)行真正的組學(xué)檢測，在指導(dǎo)疾病分子靶向治療、繪制藥物基因組圖譜指導(dǎo)個(gè)體化用藥、感染性疾病的病原微生物宏基因組鑒定及通過母體中胎兒DNA信息進(jìn)行產(chǎn)前診斷等方面已經(jīng)取得了喜人的成績。然而，由于該技術(shù)需要對DNA進(jìn)行片段化處理，測序反應(yīng)讀長較短(如Solexa與SOLiD系統(tǒng)單次讀長僅50bp)，需要對數(shù)據(jù)進(jìn)行大規(guī)模拼接，因此對分子診斷工作者掌握生物信息學(xué)知識提出了更高要求，以利于后期的測序數(shù)據(jù)分析。

　　(三)第3代測序

　　第3代測序技術(shù)的核心理念是以單分子為目標(biāo)的邊合成邊測序。該技術(shù)的操作平臺目前主要有Helicos公司的Heliscope、PacificBiosciences公司的SMRT和OxfordNanopore Technologies公司的納米孔技術(shù)等。該技術(shù)進(jìn)一步降低了成本，可對混雜的基因物質(zhì)進(jìn)行單分子檢測，故對SNP、CNV的鑒定更具功效。但是目前其進(jìn)入產(chǎn)品商業(yè)化，并最終投入臨床應(yīng)用仍有很長的距離。

　　三、基于分子構(gòu)象的分子診斷技術(shù)

　　(一)變性梯度凝膠電泳(denaturinggradient gel electrophoresis，DGGE)與單鏈構(gòu)象多態(tài)性(singlestrand conformation polymorphism，SSCP)

　　1970~1980年間，F(xiàn)ischer等與Orita等分別提出了利用核酸序列變異所導(dǎo)至雙鏈變性條件差異與單鏈空間折疊差異，通過變性與非變性PAGE對變異序列進(jìn)行分離鑒定的方法，即DGGE與SSCP。上述2項(xiàng)技術(shù)均通過變異核酸分子在空間構(gòu)象上的差異，通過特定條件下電泳速率的變化進(jìn)行檢測。正因?yàn)楹怂岱肿訕?gòu)象具有序列特異性，且對于序列的改變非常敏感，常常1個(gè)堿基的變化也能得到鑒定。但由于DGGE與SSCP均必須進(jìn)行PCR后開蓋電泳的操作，現(xiàn)已不常見于臨床檢測。

　　(二)變性高效液相色譜(denaturinghigh-performance liquid chromatography，dHPLC)

　　1997年，Oefner和Underhill建立了利用異源雙鏈變性分離變異序列、使用色譜洗脫鑒定的技術(shù)，稱為dHPLC，可自動(dòng)檢測單堿基置換及小片段核苷酸的插入或缺失。對于存在一定比例變異序列的核酸雙鏈混合物，其經(jīng)過變性和復(fù)性過程后，體系內(nèi)將出現(xiàn)2種雙鏈:一種為同源雙鏈，由野生正義鏈-野生反義鏈或變異正義鏈-變異反義鏈構(gòu)成的核酸雙鏈;另一種為異源雙鏈，即雙鏈中1條單鏈為野生型，而另1條為變異型。由于存在部分堿基錯(cuò)配的異源雙鏈DNA與同源雙鏈DNA的解鏈特征不同，在相同的部分變性條件下，異源雙鏈因存在錯(cuò)配區(qū)而更易變性，被色譜柱保留的時(shí)間短于同源雙鏈，故先被洗脫下來，從而在色譜圖中表現(xiàn)為雙峰或多峰的洗脫曲線。由于該技術(shù)使用了較高分析靈敏度的色譜技術(shù)進(jìn)行檢測，可快速檢出<5%負(fù)荷的變異序列。但需注意的是，由于該技術(shù)主要通過異源雙鏈進(jìn)行序列變異檢測，其不能明顯區(qū)分野生型與變異型的純合子。

　　(三)高分辨率熔解分析(high-resolutionmelting analysis，HRMA)

　　2003年，Wittwer等首次革命性地使用過飽和熒光染料將PCR產(chǎn)物全長進(jìn)行熒光被動(dòng)標(biāo)記，再通過簡單的產(chǎn)物熔解分析對單個(gè)堿基變化進(jìn)行鑒定。該技術(shù)的原理也是通過異源雙鏈進(jìn)行序列變異鑒定。待測樣本經(jīng)PCR擴(kuò)增后，若存在序列變異雜合子，則形成異源雙鏈，其熔解溫度大大下降。此時(shí)由于雙鏈被飽和染料完全填充，其產(chǎn)物熔解溫度的變化便可通過熔解曲線的差異得以判定。對于變異純合子而言，HRMA也可利用其較高的分辨率完成PCR產(chǎn)物單個(gè)位點(diǎn)A:T雙鍵配對與G:C三建配對熱穩(wěn)定性差異的鑒定，但是對于Ⅱ、Ⅲ類SNP的純合子變異則無法有效區(qū)分。

　　如何利用DNA構(gòu)象對序列進(jìn)行推測，從而避免成本較高的序列測定或操作繁瑣的雜交反應(yīng)一直是分子生物學(xué)研究與應(yīng)用的熱點(diǎn)問題。目前，使用構(gòu)象變化對序列變異進(jìn)行間接檢測的便捷性已得到一致肯定，尤其是HRMA可完成對變異序列單次閉管的擴(kuò)增檢測反應(yīng)。但需要注意的是，由于基于構(gòu)象變化的分子檢測手段多無法通過探針雜交或核酸序列測定對檢測的特異性進(jìn)行嚴(yán)格的保證，因此其只適合大規(guī)模的初篩，而真正的確診仍需要進(jìn)行雜交或測序的驗(yàn)證。

　　四、定量PCR(quantitativePCR，qPCR)

　　相比于其他分子診斷檢測技術(shù)，qPCR具有2項(xiàng)優(yōu)勢，即核酸擴(kuò)增和檢測在同一個(gè)封閉體系中通過熒光信號進(jìn)行，杜絕了PCR后開蓋處理所帶來擴(kuò)增產(chǎn)物的污染;同時(shí)通過動(dòng)態(tài)監(jiān)測熒光信號，可對低拷貝模板進(jìn)行定量。正是由于上述技術(shù)優(yōu)勢，qPCR已經(jīng)成為目前臨床基因擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)室接受程度最高的技術(shù)，在各類病毒、細(xì)菌等病原微生物的鑒定和基因定量檢測、基因多態(tài)性分型、基因突變篩查、基因表達(dá)水平監(jiān)控等多種臨床實(shí)踐中得到大量應(yīng)用。但伴隨著qPCR技術(shù)的迅猛發(fā)展，有關(guān)這項(xiàng)技術(shù)的質(zhì)量管理問題也日益突出，如何消除各類生物學(xué)變量所引起的檢測變異，減少或抑制實(shí)驗(yàn)操作與方法學(xué)中的各種干擾因素是qPCR技術(shù)面臨的難題。

　　(一)實(shí)時(shí)熒光定量PCR(real-timePCR)

　　1.雙鏈摻入法

　　1992年Higuchi等通過在PCR反應(yīng)液中摻入溴乙錠對每個(gè)核酸擴(kuò)增熱循環(huán)后的熒光強(qiáng)度進(jìn)行測定，提出了使用熒光強(qiáng)度與熱循環(huán)數(shù)所繪制的核酸擴(kuò)增曲線，定量反應(yīng)體系中初始模板的反應(yīng)動(dòng)力學(xué)(real-timePCR)模型，開創(chuàng)了通過實(shí)時(shí)閉管檢測熒光信號進(jìn)行核酸定量的方法。核酸染料可以嵌入DNA雙鏈，且只有嵌入雙鏈時(shí)才釋放熒光，在每1次的擴(kuò)增循環(huán)后檢測反應(yīng)管的熒光強(qiáng)度，繪制熒光強(qiáng)度-熱循環(huán)數(shù)的S形核酸擴(kuò)增曲線，以熒光閾值與擴(kuò)增曲線的交點(diǎn)在擴(kuò)增循環(huán)數(shù)軸上的投影作為循環(huán)閾值(Cyclethreshold，Ct)，則Ct與反應(yīng)體系中所含初始模板數(shù)量呈負(fù)指數(shù)關(guān)系，推斷初始模板量。隨后Morrison[22]提出了使用高靈敏度的雙鏈染料SYBR GreenI進(jìn)行反應(yīng)體系中低拷貝模板定量的方法。這一方法操作簡便，但由于僅使用擴(kuò)增引物的序列啟動(dòng)核酸擴(kuò)增，其產(chǎn)物特異性無法得到充分保證。雖然在實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)后可通過熔解曲線對產(chǎn)物特異性進(jìn)行檢驗(yàn)，但其特異性明顯遜于使用熒光探針進(jìn)行檢測，因此雙鏈摻入法并未在臨床實(shí)踐中得到認(rèn)可。

　　2.Taqman探針

　　由于雙鏈摻入法存在特異性較低的問題，1996年Heid[23]綜合之前發(fā)現(xiàn)的Taq酶的5'核酸酶活性與熒光共振能量轉(zhuǎn)移(fluorescenceresonance energy transfer，F(xiàn)RET)探針的概念提出了使用Taqman探針進(jìn)行qPCR的方法。TaqMan探針的本質(zhì)是FRET寡核苷酸探針，在探針的5'端標(biāo)記熒光報(bào)告基團(tuán)，3'端標(biāo)記熒光淬滅基團(tuán)，利用Taq酶具有5'3'外切酶活性，在PCR過程中水解與靶序列結(jié)合的寡核苷酸探針，使熒光基團(tuán)得以游離，釋放熒光信號。從而使能夠與靶序列雜交的探針在擴(kuò)增過程中釋放熒光，通過real-timePCR的原理對其進(jìn)行定量。由于其超高的特異性與成功的商品化推廣，Taqman探針已經(jīng)成為目前臨床使用最為廣泛的qPCR方法，其在各種病毒基因定量檢測、基因分型、腫瘤相關(guān)基因表達(dá)檢測等方面具有著不可替代的地位。

　　3.分子信標(biāo)

　　同樣在1996年，Tyagi等提出了使用分子信標(biāo)(moleuclarbeacons)進(jìn)行qPCR的方法，分子信標(biāo)是5'與3'端分別標(biāo)記有熒光報(bào)告基團(tuán)與淬滅基團(tuán)的寡核苷酸探針，其兩端具有互補(bǔ)的高GC序列，在qPCR反應(yīng)液中呈發(fā)夾結(jié)構(gòu)，熒光基團(tuán)與淬滅基團(tuán)發(fā)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)而保持靜息狀態(tài)。當(dāng)PCR反應(yīng)開始后，莖環(huán)結(jié)構(gòu)在變性高溫條件下打開，釋放熒光;在退火過程中，靶序列特異性探針則與模板雜交保持線性，不能與模板雜交的探針則復(fù)性為莖環(huán)結(jié)構(gòu)而熒光淬滅，通過檢測qPCR體系中退火時(shí)的熒光信號強(qiáng)度，便可以real-timePCR原理特異性檢測體系中的初始模板濃度。相比于Taqman探針，分子信標(biāo)使用發(fā)卡結(jié)構(gòu)使熒光基團(tuán)與淬滅基團(tuán)在空間上緊密結(jié)合，大大降低了檢測的熒光背景，其檢測特異性較Taqman探針更高，更適合等位基因的分型檢測。

　　4.雙雜交探針

　　1997年，Wittwer等發(fā)表了使用分別標(biāo)記熒光供體基團(tuán)與熒光受體基團(tuán)的2條相鄰寡核苷酸探針進(jìn)行qPCR的方法。雙雜交探針?biāo)鶚?biāo)記的供體基團(tuán)和受體基團(tuán)的激發(fā)光譜間具有一定重疊，且2條探針與靶核酸的雜交位置應(yīng)相互鄰近。僅當(dāng)2條探針與靶基因同時(shí)雜交時(shí)，供體與受體基因得以接近，從而通過FRET發(fā)生能量傳遞，激發(fā)熒光信號，熒光信號強(qiáng)度與反應(yīng)體系中靶序列DNA含量呈正比。由于使用了2條探針進(jìn)行靶序列雜交，該方法的特異性比傳統(tǒng)單探針檢測體系得到了極大地提升。

　　(二)數(shù)字PCR

　　早在上世紀(jì)90年代就出現(xiàn)了使用微流控陣列對單次qPCR反應(yīng)進(jìn)行分散檢測的概念�；�于這一理念，Vgelstein與Kinzter于1999年發(fā)表了數(shù)字PCR(digitalPCR)的方法，對結(jié)腸癌患者糞便中的微量K-RAS基因突變進(jìn)行了定量。相比于傳統(tǒng)的qPCR方法，數(shù)字PCR的核心是將qPCR反應(yīng)進(jìn)行微球乳糜液化，再將乳糜液分散至芯片的微反應(yīng)孔中，保證每個(gè)反應(yīng)孔中僅存在≤1個(gè)核酸模板。經(jīng)過PCR后，對每個(gè)微反應(yīng)孔的熒光信號進(jìn)行檢測，存在靶核酸模板的反應(yīng)孔會釋放熒光信號，沒有靶模板的反應(yīng)孔就沒有熒光信號，以此推算出原始溶液中待測核酸的濃度。因此，數(shù)字PCR是1種檢測反應(yīng)終點(diǎn)熒光信號進(jìn)行絕對定量的qPCR反應(yīng)，而非以模板Ct值進(jìn)行核酸定量的real-timePCR。

　　經(jīng)由Quantalife公司開發(fā)(已于2011年被BIO-RAD收購)的微滴式數(shù)字PCR是首款商品化的數(shù)字PCR檢測系統(tǒng)，目前已被廣泛運(yùn)用于微量病原微生物基因檢測、低負(fù)荷遺傳序列鑒定、基因拷貝數(shù)變異與單細(xì)胞基因表達(dá)檢測等多個(gè)臨床前沿領(lǐng)域。與傳統(tǒng)qPCR相比較，該技術(shù)具有超高的靈敏度與精密度，使其成為目前qPCR領(lǐng)域的新星。

　　五、對未來5年的展望

　　半個(gè)世紀(jì)以來分子診斷的高速發(fā)展離不開分子生物學(xué)技術(shù)日新月異的進(jìn)步。概而言之，在過去的50年中分子診斷技術(shù)取得了三大轉(zhuǎn)化與3項(xiàng)提升：即報(bào)告信號檢測從放射核素標(biāo)記向熒光標(biāo)記轉(zhuǎn)化，操作方法由手工操作向全自動(dòng)化轉(zhuǎn)化，檢測分析通量從單一標(biāo)志物向高通量多組學(xué)聯(lián)合判斷轉(zhuǎn)化;檢測靈敏度、精密度、特異性的快速提升。

　　在未來5年中，我國分子診斷事業(yè)將迎來兩方面的進(jìn)步。隨著衛(wèi)生監(jiān)管部門對分子診斷重要性的認(rèn)識不斷深入與越來越多高學(xué)歷、高素質(zhì)人才的進(jìn)入，分子診斷將會出現(xiàn)理念的革命性進(jìn)步，高通量技術(shù)將更多的進(jìn)入臨床的實(shí)際應(yīng)用中。隨著技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展，傳統(tǒng)針對特定基因異常、病原微生物感染鑒定的方法學(xué)，也將在檢測的各項(xiàng)分析性能與操作便捷程度上取得長足的進(jìn)步。對于傳統(tǒng)人力與時(shí)間成本較高的檢測方法學(xué)，將出現(xiàn)兩極分化的態(tài)勢，即Southern等經(jīng)典的檢測金標(biāo)準(zhǔn)將得到保留;而ASO-RDB等靈敏度、特異性均不能滿足實(shí)際臨床需求的方法將快速被新型技術(shù)所取代。最終，分子診斷也必將一改目前僅僅用于病原微生物基因檢測與部分遺傳性疾病診斷的局面，形成由腫瘤學(xué)、遺傳學(xué)、微生物學(xué)、藥物基因組學(xué)四足鼎立，快速發(fā)展的景象。